Optimisation of single-nuclei isolation and RNA sequencing of parasitic nematodes
本研究提出了一种针对寄生性线虫优化的单细胞核分离方案(SNIP),该方案显著提高了产量和 RNA 质量,优于现有方法,从而能够生成高分辨率的转录组数据,以跨越不同的生命阶段和性别,推动对健康与疾病中非模式物种的理解。
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为了理解生物是如何运作的,科学家经常观察其最小的构建模块:细胞。在人类和熟悉的实验室动物中,研究人员已经非常擅长读取单个细胞内的遗传指令,从而揭示不同组织如何运作以及疾病是如何开始的。这种被称为单细胞测序的方法彻底改变了生物学。然而,世界上大多数生命形式并不是人类或实验小鼠。它们是非模型生物,即从未在实验室环境中被研究过的生物,通常生活在难以到达的地方,或者生活在其他动物体内。对于这些生物,用于分离细胞的标准方法往往会失效。它们的身体受到坚硬外层的保护,无法轻易在培养皿中生长,而且科学家通常只能在它们被冻结后才能接触到它们。由于缺乏在细胞层面研究这些生物的方法,我们对它们的生物学、它们在生态系统中的作用以及它们如何导致疾病的理解仍然是不完整的。
一个研究小组致力于为寄生虫蠕虫(特别是线虫)解决这个问题,线虫是导致牲畜和人类疾病的主要原因。这些蠕虫被一层坚硬且具有保护性的皮肤——角质层所包裹,这使得它们极难在不破坏内部脆弱遗传物质的情况下被破开。科学家们首先测试了用于从其他生物中分离细胞核(即保存遗传代码的细胞指挥中心)的三种现有方法。他们发现,这些标准方法对于寄生虫蠕虫效率低下,经常留下大量未消化的组织块,或者对细胞核造成如此大的损伤,以至于遗传信息都丢失了。一种专为微小的秀丽隐杆线虫(C. elegans)设计的方法无法破开较大的寄生种类。另一种改编自人体组织的方法留下了过多的碎屑。第三种方法虽然回收了一些细胞核,但损坏了它们的外膜,导致遗传物质泄漏出来。
意识到现有的工具并非为这些特定的挑战而设计,研究人员开发了一种新的、经过优化的方案,并将其命名为 SNIP。成功的关键在于在整个过程中保持蠕虫处于冻结状态。研究团队并没有将蠕虫解冻并在冰上切碎(这有损坏遗传物质的风险),而是直接在管中使用预冷的剪刀将冻结的蠕虫切成小块。对于微小的幼虫阶段,他们使用由干冰冷却的研钵和研杵来研磨冻结的蠕虫。然后,他们使用玻璃研杵进行一系列特定力度(既有轻柔也有有力)的研磨动作,将组织破碎,并在细胞核受到进一步研磨损坏之前小心地收集释放出的细胞核。最后,他们使用一台分选机移除了那些会导致以往方法发生堵塞的微小碎片,从而留下了一份干净且健康的细胞核悬浮液。
这种新方法的实验结果非常显著。当应用于成年雌性蠕虫时,SNIP 方案回收的细胞核数量是表现最好的三种现有方法中的 1.7 到 4.1 倍。更重要的是,它产生的细胞核含有显著更多的遗传物质——每个细胞核的 RNA 含量约为之前最好方法的 3.2 倍。研究人员在两种不同的寄生蠕虫物种(捻斗虫 Haemonchus contortus 和毛尾虫 Trichuris muris)的不同生命阶段,以及雄性和雌性蠕虫身上验证了这一新技术的有效性。他们成功地从冻结样本中生成了遗传数据,证明了该方法即使在样本储存很长时间后依然有效。这种灵活性至关重要,因为它允许科学家从不同地点和不同时间收集样本,进行存储,并统一进行处理,这消除了通常在分别处理样本时会发生的许多技术误差。
利用这种新方法,该团队能够读取这些寄生虫数千个单个细胞核的遗传活动。数据揭示了雄性和雌性蠕虫之间,以及成年蠕虫与幼虫阶段之间明显的基因活动差异。他们识别出了一些似乎专门从事特定任务的细胞群,例如形成卵子或产生精子的细胞,以及另一些似乎参与呼吸或消化的细胞。虽然研究人员指出,他们的初步遗传图谱仍然较为粗略,需要进一步完善,但这项研究表明,现在已经可以为这些难以研究的生物建立详细的细胞图谱。通过为冻结的寄生蠕虫提供一种可靠的隔离细胞核的方法,这项工作为深入了解这些寄生虫如何发育、它们如何与宿主相互作用,以及潜在地如何开发控制它们的新方法打开了大门。
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