Use of water-soluble dye in antiseptic fixed cadaveric vascular mold silicone injection

Resumen Técnico: Uso de Colorante Hidrosoluble en la Inyección de Silicona para Moldes Vasculares de Cadáveres con Fijación Antiséptica

Planteamiento del Problema
La disección de cabeza de cadáver sigue siendo el método más eficaz para el aprendizaje neuroanatómico y el entrenamiento quirúrgico. Un componente crítico de este proceso es la perfusión de los vasos sanguíneos con silicona coloreada para distinguir las arterias de las venas y mejorar la claridad visual. Si bien en los laboratorios chinos nacionales se suelen utilizar comúatamente tintes liposolubles mezclados con silicona de moldeo (debido al alto coste y la dificultad de obtener la silicona importada de Dow Corning), este estudio identifica una limitación significativa: los tintes liposolubles tienden a extravasarse desde las paredes de los vasos hacia los tejidos circundantes. Esta fuga provoca una tinción severa del tejido cerebral y de los nervios craneales, un problema que empeora con el tiempo, lo que oscurece los detalles anatómicos y reduce la calidad de los especímenes para la enseñanza y la fotografía.

Metodología
El estudio utilizó seis especímenes de cabeza de cadáver con fijación antiséptica (>2 años de antigüedad) de la Universidad Médica Capital. Las cabezas se prepararon realizando un corte a nivel de C7 para facilitar el acceso a la arteria vertebral. La metodología consistió en las siguientes etapas clave:

1. Preparación Vascular: Se separó el tejido conectivo para exponer las arterias carótidas comunes, las arterias vertebrales y las venas yugulares internas. Se insertaron y aseguraron cánulas caseras (bridas de nailon para las carótidas, agujas de inserción para las vertebrales).
2. Lavado: Un paso crítico consistió en el lavado del sistema vascular con agua del grifo a temperatura ambiente utilizando una jeringa de 50 ml para eliminar trombos y sedimentos post-mortem. La secuencia siguió el orden: carótida común, vertebral, yugular interna dominante, y luego yugular interna no dominante. Se utilizó peróxido de hidrógeno si persistían los coágulos. Se evaluó la permeabilidad de la Circulación de Willis y de las arterias comunicantes durante esta fase.
3. Preparación de la Solución de Perfusión: Se compararon dos grupos:
   • Grupo de colorante liposoluble: Silicona de moldeo (825#) mezclada 1:1 con aceite de silicona, coloreada con tintes rojos/azules liposolubles, y curada con 1 ml de agente de curado por cada 200 ml de mezcla. Tiempo de curado: 7–12 horas.
   • Grupo de colorante hidrosoluble: Silicona de moldeo mezclada 1:1 con aceite de silicona, coloreada con pastas de color rojo/azul hidrosolubles concentradas, y curada con 1,3 ml de agente de curado por cada 200 ml de mezcla. Tiempo de curado: ~3 horas.
4. Inyección: Los especímenes se sumergieron en un cubo transparente de agua. La silicona teñida se inyectó a través de las arterias carótidas y vertebrales (y venas yugulares donde fuera aplicable) mediante jeringas. El entorno acuoso permitió la recuperación inmediata de cualquier silicona que presentara fugas, evitando la contaminación del espécimen.
5. Observación: Los especímenes fueron disecados y observados en intervalos que oscilaron entre 1 semana y 2 meses para evaluar el llenado de los vasos, el contraste de color y la tinción tisular.

Resultos Clave
La comparación entre los dos tipos de colorante produjo resultados distintos:

• Grupo de Colorante Liposoluble: Los tres especímenes exhibieron extravasación del tinte. Esto resultó en la tinción de los tejidos cerebrales y los nervios craneales. La severidad de la tinción aumentó con la duración del intervalo post-perfusión (variando de leve a las 1 semana hasta severa a las 6 semanas).
• Grupo de Colorante Hidrosoluble: Todos los tres especímenes demostraron una excelente perfusión con colores brillantes y un contraste nítido entre arterias y venas. Crucialmente, no hubo tinción del tejido cerebral ni de los nervios craneales. Incluso en los casos donde ocurrió una ruptura de vaso durante la perfusión (Especímenes 4 y 5), provocando el contacto directo entre la silicona filtrada y el tejido cerebral, la tinción resultante fue inexistente o solo leve, contrastando fuertemente con la tinción severa observada en el grupo de colorante liposoluble.

Contribuciones Clave

1. Optimización de la Solubilidad del Colorante: El estudio adaptó con éxito tintes hidrosolubles para su uso en la perfusión de silicona de moldeo, una técnica que tradicionalmente dependía de tintes liposolubles.
2. Protocolo de Curado Rápido: Al ajustar la proporción del agente de curado (1,3 ml frente a 1 ml), los autores lograron un tiempo de curado rápido de aproximadamente 3 horas. Este equilibrio permitió que la silicona fluyera suficientemente en los vasos distales mientras aseguraba que el colorante hidrosoluble permaneciera uniformemente disperso y no migrara hacia los tejidos circundantes.
3. Estandarización de Bajo Coste: El método utiliza materiales disponibles domésticamente y económicos (silicona de moldeo Quanzhou Linde y pastas de color Tong Cheng Torchbearer), haciendo que la perfusión vascular de alta calidad sea accesible para los laboratorios de neuroanatomía que no pueden costear productos importados de Dow Corning.
4. Preservación de la Integridad Anatómica: La técnica evita que la fuga de colorante oscurezca las estructuras neuroanatómicas críticas (nervios y parénquima cerebral), mejorando significamente la calidad visual de los especímenes disecados.

Significado y Reivindicaciones
Los autores afirman que la técnica de solidificación rápida utilizando silicona teñida con colorante hidrosoluble es superior para la enseñanza y experimentación neuroanatómica. El método produce especímenes con colores de vasos vívidos y contrastes nítidos, preservando al mismo tiempo la apariencia natural del tejido cerebral y los nervios craneales. El estudio postula que este enfoque es sencillo de operar, económico y permite comenzar la disección poco después del periodo de curado de 3 horas. Los autores concluyen que esta técnica establece una base sólida para la educación neuroanatómica avanzada y tiene como objetivo ayudar a estandarizar los procedimientos de perfusión vascular de cadáveres en los laboratorios de neuroanatomía nacionales.